Allgemeines
Teilnehmende Labore
Basisdaten
Datenauswertung
Besonderheiten einzelner Erreger
Sonstiges

Allgemeines
Seit einigen Jahren wird weltweit die Zunahme von bakteriellen Krankheitserregern beobachtet, die gegenüber Antibiotika nicht mehr ausreichend empfindlich oder resistent reagieren. Die Behandlung bakterieller Infektionskrankheiten wird dadurch erschwert. Bereits im Jahr 2008 wurde von der Bundesregierung mit DART, der Deutschen Antibiotikaresistenzstrategie, ein Konzept vorgestellt, um die weitere Entwicklung und Ausbreitung von Antibiotikaresistenzen zu reduzieren. Mit DART 2020, von der Bundesregierung im Mai 2015 beschlossen, wurde dieses Konzept weiterentwickelt und ausgebaut.

Um wirksame Kontrollstrategien und Präventionsmaßnahmen einleiten zu können, müssen verlässliche Daten zur Resistenzentwicklung erhoben werden. In Europa und in Deutschland tragen multizentrische Untersuchungen dazu bei, Informationen über die Resistenzausbreitung zu vermitteln. Die Resistenzentwicklung der Infektionserreger betrifft aber nicht in gleicher Weise alle Länder, Regionen, Krankenhäuser oder gar Stationen innerhalb eines Krankenhauses. Daher ist die Kenntnis der regionalen Resistenzsituation außerordentlich wichtig. Sie sollte die Grundlage für eine regionsspezifische, kalkulierte Antibiotikatherapie sein. Sie kann darüber hinaus Tendenzen zur Resistenzentwicklung aufzeigen sowie zur Kosteneinsparung durch Reduzierung des Antibiotikaverbrauchs beitragen.

Ziel des Monitoring Systems ARMIN ist es, die Resistenzentwicklung der klinisch relevanten Bakterien im stationären und ambulanten Versorgungsbereich in Niedersachsen systematisch zu erfassen und langfristig zu beobachten. Es werden anonymisierte Ergebnisse der Resistenztestungen genutzt, wie sie routinemäßig bei bakteriologischen Untersuchungen in mikrobiologischen Laboratorien durchgeführt werden.

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Teilnehmende Labore
Bisher sind 15 Labore an dem Monitoring System beteiligt. Voraussetzung für die Teilnahme ist die abgeschlossene oder angestrebte Akkreditierung der Labore. Für den Datentransfer wurde eine spezielle Schnittstelle eingerichtet, die eine anonymisierte Datenübermittlung an das NLGA ermöglicht.

Die teilnehmenden Labore sind:

• Institut für Laboratoriumsmedizin und MVZ Laborzentrum Weser-Ems, Niels-Stensen-Kliniken am Marienhospital Osnabrück
  
• Institut für Medizinische Mikrobiologie, Universitätsmedizin Göttingen
  
• Klinikum Region Hannover GmbH Institut für Med. Mikrobiologie und Hygiene (Hannover)
• Laborarztpraxis Osnabrück Dr. med. J. Enzenauer und Kollegen
  
• Labor Dr. von Froreich - Bioscientia GmbH (Hamburg)
• MVZ Labor Limbach Hannover
  
• LADR GmbH Medizinisches Versorgungszentrum Braunschweig
  
• LADR GmbH Medizinisches Versorgungszentrum Dr. Kramer und Kollegen (Geesthacht)
• LADR GmbH MVZ Labor Nord-West (Schüttorf)
• Medizinisches Labor Hannover
  
• MVZ Medizinisches Labor Bremen GmbH
  
• MVZ Labor wagnerstibbe für Medizinische Mikrobiologie, Infektiologie, Hygiene und Tropenmedizin (Göttingen)
• nordlab - Partnerschaftspraxis für Laboratoriumsmedizin und Mikrobiologie (Hameln)
• Städtisches Klinikum Braunschweig gGmbH, Institut für Mikrobiologie, Immunologie und Krankenhaushygiene
• SYNLAB MVZ Jade-Weser GmbH
  

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Basisdaten
In den teilnehmenden Laboren werden bei der Mehrzahl der Bakterien für die Antibiotikatestung MHK-Bestimmungen (MHK = minimale Hemmkonzentration) automatisiert durchgeführt. Bei anspruchsvollen Erregern wird der Agardiffusionstest eingesetzt. An das NLGA werden keine Rohdaten der Empfindlichkeitsprüfung (MHK-Werte, Hemmhofdurchmesser), sondern die bewerteten Befunde (sensibel, intermediär, resistent) übermittelt.
Eine wichtige Einteilung der übermittelten Daten erfolgt nach deren Herkunft: Unterschieden wird zwischen Daten aus dem Krankenhaus und Daten aus dem niedergelassenen Versorgungsbereich (in der derzeitigen Auswertung sind für die Krankenhäuser Daten der Normal- und Intensivstation zusammengefasst).
Darüber hinaus werden Angaben zu Geschlecht und Alter des Patienten sowie die zweistellige Postleitzahl der Ersteinsender und das untersuchte Material zu jeder Testung mitgeteilt.

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Datenauswertung
Gegenwärtig findet die Resistenzprüfung in den Laboren nach unterschiedlichen Normierungen statt (Grenzwerte nach CLSI M100-S17 und nach EUCAST). Die statistische Auswertung der übermittelten Daten zeigte allerdings nur geringfügige Abweichungen zwischen den eingesetzten Grenzwerten. Schwerpunkt der ARMIN-Darstellung ist die Trendanalyse der Resistenzdaten. Eine einheitliche Diagnostik und Bewertung von Resistenzdaten wird von den ARMIN-Teilnehmern angestrebt und erarbeitet.

• Die Berechnung des Resistenzanteils erfolgt für die 14 am häufigsten nachgewiesenen bakteriellen Infektionserreger.
• Die Angabe der Resistenz erfolgt als Resistenzanteil in %. Dieser berechnet sich nach: (Anzahl resistente Erreger / Anzahl getestete Erreger) *100, pro Jahr
• Wiederholte Isolierungen desselben Bakterienstammes (copy strain) werden nicht berücksichtigt. Als copy strain wurden - unabhängig von der Lokalisation - bei jeder Auswertung 90 Tage pro Patient festgelegt.
• Es erfolgt eine Differenzierung in Krankenhäuser (zusammengefasst sind derzeit Normal- und Intensivstation) und den niedergelassenen Versorgungsbereich.
• Lag die Anzahl der Isolate, die auf ein bestimmtes Antibiotikum getestet wurden <50/Jahr (bezogen auf die Gesamtanzahl aus allen Laboren) wurde für das betreffende Jahr kein Resistenzanteil des jeweiligen Antibiotikums berechnet.
• Screening-Materialien wurden für die Berechnung der Resistenzen ausgeschlossen, soweite eine Kennzeichnung durch die Labore dies ermöglichte.
• Da bei nicht invasiven Infektionen eine Differenzierung der Enterokokkenspezies oft nur bei einem auffälligen Resistenzprofil erfolgt, und es demzufolge zu einer Verzerrung des Resistenzanteils kommt, werden für E. faecium nur die Ergebnisse aus Blutkulturen in die Auswertung einbezogen.
• Für die Berechnung der Resistenzraten wurden Antibiotika zusammengefasst:
  Tetrazyklin = Doxyzyklin; Ampicillin = Amoxicillin; Oxacillin = Flucloxacillin;
  nur für Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae und Proteus mirabilis: Co-Trimoxazol = Trimethoprim; Cefotaxim = Ceftazidim
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Keime mit besonderem Resistenzverhalten:

• MRSA = Methicillinresistenter Staphylococcus aureus
  Resistenz gegenüber allen Betalaktam-Antibiotika
• VRE = Vancomycin-resistente Enterokokken
  Partielle Kreuzresistenz mit Teicoplanin (Typ Van A, Van D)
• ESBL-bildende Enterobakterien = extended spectrum beta-lactamases-bildenden Enterobakterien
  Resistenz gegenüber allen Penicillinen, Cefalosporinen und Aztreonam
  Da die ESBL-Bildung von gramnegativen Erregern nicht von allen Laboren eindeutig übermittelt wird, wird in der Darstellung auf die Resistenz gegenüber dem Drittgenerationscephalosporin Cefotaxim verwiesen

Sonstiges
Mupirocin:
Wird nur topisch bei MRSA Besiedlung eingesetzt.

Nitrofurantoin:
Eine Zulassung existiert nur für unkomplizierte Harnwegsinfektionen (HWI). Nach EUCAST sind nur Grenzwerte für die in ARMIN ausgewiesenen Erreger Escherichia coli und Enterococcus faecalis hinterlegt.

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